合理的实验室分区:
实验室内各工作区的实验用品,包括移液器等应专用。如有可能,应在装有紫外灯的层流式工作台(如生物安全柜、超净工作台)内,吸加PCR试剂,工作台内应放置PCR专业用的微量离心机、一次性手套、各量程的移液器和其他必须物品。
正确的实验操作:
吸加PCR试剂和模板的操作应严格按要求进行,吸样要慢,尽量一次性完成,忌多次抽吸,以免交叉污染或产生气溶胶污染。
实验的过程中应勤换手套,在进出不同区域或进行模板操作后,都应及时更换手套。
装有PCR试剂的微量离心管在打开之前应先做瞬时离心(约10s),将管壁及管盖上的液体甩至管底部,从而减少污染手套或加样器的机会。开管动作要轻,以防管内液体溅出或形成气溶胶,造成污染。
在同时进行多个PCR反应时,应制备主反应混合液,再分装至PCR反应管,最后添加样品核酸模板,以减少单个添加操作繁琐造成的污染。
实验器具和试剂:
实验室自己配置的试剂,如去离子水、缓冲液等,在使用之前均应高压灭菌或过滤除菌。
分装PCR试剂:所有的PCR试剂都应小量分装,以减少重复取样次数,并置于-20℃保存,适当时,最好做到专人专用。另外,PCR试剂、PCR反应液应与样品及PCR产物分开保存,不应放于同一冰盒或冰箱。
所有吸头、反应管等应一次性使用,使用之前,都应经过高压处理。若条件允许,最好使用带滤器的枪头。各工作区内的移液器要有标识,应固定使用用途,不能交叉使用。
实验设计:
实验设计方面应遵循实验室内部质量控制的相关规定,实验中至少应:
设置目标DNA阳性对照反应。对靶序列所作的适当的稀释工作应于实验前在实验室内别的位置进行,这样可防止将靶DNA的浓溶液带到实验室中专门进行PCR的位置。
设置PCR试剂阴性对照和目标DNA阴性对照反应。
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